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本试剂盒适用于从小量全血样本中快速提取基因组DNA。独特的结合液/蛋白酶K迅速裂解细胞和灭活细胞内核酸酶，然后基因组DNA在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜，再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤，抑制物去除液和漂洗液将细胞代谢物、蛋白等杂质去除，最后低盐的洗脱缓冲液将纯净基因组DNA从硅基质膜上洗脱。

• 不需要使用有毒的苯酚等试剂，也不需要乙醇沉淀等步骤。
  
• 快速简捷，单个样品操作一般可在20分钟内完成。
  
• 多次柱漂洗确保高纯度，典型的产量200μL全血可提取出3～12μg，OD260/OD280典型的比值达1.7～1.9，长度可达30～50kb，可直接用于PCR、Southern-blot和各种酶切反应。
  
• 从十几个配方中优选出的红细胞裂解液配方，裂解快速完全，客户可根据需要选择购买。
  
• 典型的产量200μL全血可提取出3～12μg基因组DNA。

• 结合液CB或者抑制物去除液IR低温时可能出现析出和沉淀，可以在37℃水浴几分钟帮助重新溶解，恢复澄清透明后冷却到室温即可使用。
  
• 蛋白酶K保存在即用型甘油缓冲液中，常温运输。收到后，不超过25℃室温至少保存6个月，4℃保存12个月，-20℃保存2年。
  
• 避免试剂长时间暴露于空气中发生挥发、氧化、pH值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。

• 第一次使用前请先在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇，充分混匀，加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇，以免多次加入!
  
• 所有的离心步骤均在室温完成，使用转速可以达到13000rpm的传统台式离心机，如Eppendorf 5415C或者类似离心机。
  
• 不同样品尤其疾病样品中白细胞数量差异可能非常大，因此产量的个体差异也可能非常大。
  
• 需要自备异丙醇。
  
• 开始实验前将需要的水浴先预热到70℃备用。
  
• 为了最佳效果，最好使用新鲜血液标本或者4℃存放少于3天的标本，不要使用反复冻融超过3次的标本，否则会严重降低产量。
  
• 洗脱液EB不含有螯合剂EDTA，不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱，但应该确保批pH大于7.5，pH过低影响洗脱效率。用水洗脱DNA应该保存在-20℃。DNA如果需要长期保存，可以用TE缓冲液洗脱（10mM Tris-HCl，1mM EDTA，pH8.0），但是EDTA可能下游酶切反应，使用时可以适当稀释。

• 取200μL新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液，放入1.5mL离心管。
  
  • 如果全血起始量小于200μL，则用缓冲液BB补足到200μL。如果起始量介于200μL～300μL之间，则后续操作需要按照比例增加试剂用量。如果起始量介于300μL～1mL之间，则需要先进行红细胞裂解操作（见本说明书后附录）。
    
  • 如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量5～20μL，可加缓冲液BB补足到200μL后进行后续步骤。
• 加入20μL蛋白酶K (20mg/mL)溶液，充分混匀，再加入200μL结合液CB，立刻涡旋振荡充分混匀，在70℃放置10分钟。溶液应变清亮（但颜色偏黑色）。
  
  • 可选步骤，一般不需要:如果RNA残留较多，需要去除RNA，可以在加入200μL结合液CB前加20μL RNase A(25mg/mL)溶液，振荡混匀，室温放置5～10分钟。
    
  • 平衡液预处理吸附柱备用：使用平衡液预处理硅胶膜吸附柱为必做步骤，具体方法参见附录参考“附录2：关于平衡液的使用”。
• 冷却后加入100μL异丙醇，立刻涡旋振荡充分混匀，此时可能会出现絮状沉淀。
  
  • 上述步骤中立刻涡旋或者吹打充分混匀非常重要，混匀不充分严重降低产量，必要时如样品粘稠不易混匀时可以涡旋振荡15秒混匀。
• 将上一步混合物（包括可能有的沉淀）加入一个吸附柱AC中，（吸附柱放入收集管中）13000rpm离心30～60秒，倒掉收集管中的废液。
  
• 加入500μL抑制物去除液IR，12000rpm离心30秒，弃废液。
  
• 加入600μL漂洗液WB（请先检查是否已加入无水乙醇!），12000rpm离心30秒，弃掉废液。
  
• 加入600μL漂洗液WB，12000rpm离心30秒，弃掉废液。
  
• 将吸附柱AC放回空收集管中，13000rpm离心2分钟，尽量除去漂洗液，以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
  
• 取出吸附柱AC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加100μL洗脱缓冲液EB（洗脱缓冲液事先在65～70℃水浴中预热效果更好），室温放置3～5分钟，12000rpm离心1分钟。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置2分钟，12000rpm离心1分钟。
  
  • 洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要DNA浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积不应少于50μL，体积过小降低DNA洗脱效率，减少DNA产量。
• DNA可以存放在2～8℃，如果要长时间存放，可以放置在-20℃。

• 吸取900μL红细胞裂解液到一个1.5mL离心管或者3mL红细胞裂解液到一个15mL离心管。（红细胞裂解液可向本公司购买）
  
• 将抗凝全血（使用前回复到室温）颠倒混匀后，吸取300μL全血和1mL全血分别加到上述1.5mL和15mL离心管中，颠倒6～8次，并倒置轻弹管壁，确保充分混匀。
  
• 室温放置10分钟（期间应该颠倒轻弹混匀数次，帮助裂解红细胞）。
  
• 12000rpm离心20秒（对于1.5mL离心管）或2000～3000rpm离心5分钟（对于15mL离心管），倒弃红色上清，并小心的尽可能多的吸弃上清（注意不要吸到管底的细胞团），留下完整的管底白细胞团和大约10μL的残留上清。
  
  • 离心后在管底应该见到白色的白细胞团，也可能有一些红细胞残片和白细胞团在一起，但是如果看到的是大部分的红色细胞团，说明红细胞裂解很不充分，应该再加入红细胞裂解液重悬细胞团后重复步骤3、4。
• 加入200μL缓冲液BB涡旋振荡重悬白细胞团，充分分散白细胞团。
  
  • 其中由于肝素抗凝血的白细胞沉淀团很难打散重悬，影响后续实验裂解效果，建议选用非肝素的抗凝剂收集血液标本。
• 现在可以按照操作步骤提取全血基因组DNA了。

• 介绍：核酸吸附硅胶膜柱子长期放置过程中会同空气中的电荷/尘埃发生反应而影响其核酸的结合能力。硅胶柱经平衡液预处理后可大大减少柱子中硅胶膜的憎水基团，提高核酸的结合能力。从而提高硅胶柱子回收效率或者产量。平衡液是强碱性溶液，若不小心碰到，请用大量自来水清洗。用完后需盖紧瓶盖，以免接触空气。室温保存。在保存过程中可能有沉淀生成，请加热至37℃使沉淀完全消失。
  
• 使用方法：取一个新的硅胶膜吸附柱子装在收集管中，吸取100μL的平衡液至柱子中。13000rpm离心1分钟，倒掉收集管中废液，将吸附柱子重新放回收集管。此时平衡液预处理柱子完毕。接后续的操作步骤。